Wee1 は、分裂酵母 Schizosaccharomyces pombe の核 内にみられるプロテインキナーゼ である。約96 kDa のタンパク質であり、細胞周期 の進行を調節する重要な因子である。Wee1はCdk1 (Cdc2)を阻害して有糸分裂 の開始を阻害することで、細胞のサイズに影響を及ぼす。Wee1のホモログは、哺乳類を含む多くの生物種に存在する。
概要
細胞のサイズの調節は、細胞の機能性を保証するうえで重要である。細胞のサイズは、栄養素、成長因子、機能的負荷といった環境因子以外に、cell size checkpointと呼ばれるチェックポイント によっても制御されている。
Wee1はこのチェックポイントの構成要素の1つである。Wee1は有糸分裂へ移行する時点を決定するキナーゼであり、娘細胞のサイズに影響を及ぼす。Wee1の機能が失われると、細胞分裂が早期に生じるため娘細胞のサイズは正常よりも小さくなる。
Wee1の名称は「小さい」を意味するスコットランド英語 "wee"に由来し、発見者であるポール・ナース は発見時にスコットランドのエディンバラ大学に勤務していた[ 1] [ 2] 。
機能
Wee1の役割とその調節
Wee1は、Cdk1の2つの部位、Tyr15とThr14をリン酸化することで阻害する[ 3] 。Cdk1は、さまざまな細胞周期チェックポイントのサイクリン依存性経路に重要である。Wee1によるCdk1の阻害が重要となるチェックポイントは少なくとも3つ存在する。
G2 /Mチェックポイント : Wee1はCdk1のTyr15とThr14をリン酸化してキナーゼ活性を低く保って有糸分裂への移行を阻害し、その結果さらなる細胞成長が生じる場合がある。Wee1によるCdk1の不活性化は、基質の競合による超感受性 を示す[ 4] 。有糸分裂の開始時にはWee1の活性はいくつかの調節因子によって低下し、Cdk1の活性は増大する。分裂酵母では、プロテインキナーゼPom1 (英語版 ) が細胞の極に局在し、Cdr2がCdr1を介してWee1を阻害する経路が活性化される。Cdk1自身もWee1をリン酸化によって負に調節しており、ポジティブフィードバックループが形成されている。Wee1活性の低下だけでは有糸分裂の開始には不十分であり、サイクリンの合成やCDK活性化キナーゼ (英語版 ) (CAK)によるリン酸化も必要である[ 5] 。
Cell size checkpoint: 小さな細胞が有糸分裂を開始することを防ぐチェックポイントが存在する証拠が得られている。このチェックポイントにおいて、Wee1は細胞のサイズと細胞周期の進行を調整する役割を果たしている[ 6] 。
DNA損傷チェックポイント: このチェックポイントもG2 /M期の移行を制御している。分裂酵母では、このチェックポイントはDNA損傷(ガンマ線 照射によるものなど)を有する細胞の有糸分裂の開始を遅らせている。G2 期の延長はWee1に依存しており、変異体ではガンマ線照射後のG2 期の延長がみられない[ 7] 。
Wee1キナーゼのエピジェネティック な機能も報告されている。Wee1はヒストンH2B のTyr37残基をリン酸化し、ヒストンの発現を全般的に調節していることが示されている[ 8] [ 9] 。
ホモログ
ヒトには、WEE1 (英語版 ) (WEE1A)、WEE2(WEE1B)という2種類のWee1ホモログの存在が知られている。これらはCdk1のホモログであるCDK1に対して作用する。出芽酵母 Saccharomyces cerevisiae のWee1ホモログはSwe1と呼ばれる。
調節
Cdk1とサイクリンB は成熟促進因子 (英語版 ) (MPF)を構成し、有糸分裂への移行を促進する。MPFはWee1によるリン酸化によって不活性化され、ホスファターゼCdc25 によって活性化される。Cdc25はPoloキナーゼ によって活性化され、Chk1 によって不活性化される[ 6] 。分裂酵母におけるWee1の調節は主に、Cdr2やCdr1を含むPom1経路によるリン酸化の制御下に置かれている[ 10] [ 11] [ 12] [ 13] 。G2 /M期の移行時には、Cdk1はCdc25によるTyr15の脱リン酸化によって活性化され、それと同時にWee1はNim1/Cdr1によるC末端触媒ドメインのリン酸化によって不活性化される[ 12] 。また、活性型MPFはCdc25の活性化とWee1の不活性化によって自身の活性を促進するポジティブフィードバックループを形成するが、その詳細は解明されていない[ 6] 。
高等真核生物においては、Wee1の不活性化はリン酸化と分解の双方によって行われる[ 14] 。タンパク質複合体SCF β-TrCP1/2 はWee1Aのユビキチン化 を担うE3ユビキチンリガーゼ である。M期キナーゼPlk1 とCdc2はWee1Aの2つのセリン残基をリン酸化し、このリン酸化がSCFβ-TrCP1/2 によって認識される[ 15] 。
出芽酵母では、サイクリン依存性キナーゼCdc28(Cdk1ホモログ)はSwe1(Wee1ホモログ)によってリン酸化され、Mih1(Cdc25ホモログ)によって脱リン酸化される。Hsl1(Nim1/Cdr1ホモログ)は関連キナーゼGin4、Kcc4とともにSwe1をbud neck(出芽のくびれ部分)へ局在させる。この部位と関連したキナーゼであるCla4とCdc5(Poloキナーゼホモログ)は細胞周期のさまざまな段階でSwe1をリン酸化する。Swe1はClb2-Cdc28によってもリン酸化され、このリン酸化はCdc5によるさらなるリン酸化のための認識シグナルとして機能する。Swe1は分解によっても調節されている。Swe1はClb2-Cdc28とCdc5によって高リン酸化状態となり、このことが高等真核生物と同様にSCFユビキチンリガーゼによるユビキチン化と分解のシグナルとなっている可能性がある[ 16] 。
がんにおける役割
WEE1はDNA損傷によって誘発されるアポトーシス を阻害する。KLF2 (英語版 ) はヒトのWEE1の発現を負に調節しており、KLF2の発現はがん細胞のDNA損傷によるアポトーシス感受性を高める[ 17] 。
変異体の表現型
Wee1は、有糸分裂に対し用量依存的な阻害因子として作用する[ 18] 。そのため、Wee1タンパク質の量は細胞のサイズと相関する。分裂酵母のwee1 変異体(wee1− )は、野生型細胞と比較して有意に小さなサイズの時点で分裂する。Wee1は有糸分裂の開始を阻害するため、Wee1が存在しない場合には正常よりも早期の小さなサイズの段階で分裂が引き起こされると考えられる。逆にWee1の発現が増大した場合には有糸分裂は遅延し、細胞はより大きなサイズへと成長する。
出典
関連項目
外部リンク