Die TGGE ist eine Gelelektrophorese mit einem Temperaturunterschied über die Länge des Gels. Ab einer bestimmten Temperatur schmilzt doppelsträngige DNA in zwei Einzelstränge. Der Schmelzpunkt ist von der DNA-Sequenz und ihrer Basenpaarung abhängig und lässt sich näherungsweise berechnen. Ab der Schmelztemperatur sinkt die Wanderungsgeschwindigkeit der DNA im Gel deutlich. Der Gradient kann parallel zur elektrophoretischen Wanderungsrichtung (englischparallel TGGE) oder orthogonal (engl. perpendicular TGGE) dazu angelegt werden. Die orthogonal orientierten Gradienten erlauben die Identifikation des Schmelzpunktes und des optimalen Temperaturbereichs für eine möglichst scharfe Trennung. Bei parallel zur Elektrophorese verlaufenden Temperaturgradienten erfolgt eine Auftrennung anhand unterschiedlicher Schmelzpunkte, und nur anfänglich nach der Molmasse. Dadurch können sowohl Mutationen als auch Sekundärstrukturen erkannt werden. Eine Variante der TGGE verwendet zuvor eine Hybridisierung zu Heteroduplexen, um die Unterschiede in der elektrophoretischen Mobilität zu verstärken.[3]
Denaturierungsgradientengelelektrophorese
Bei der DGGE enthält das Gel einen chemischen Gradienten eines Chaotrops.[4] Die Aufhebung von Sekundärstrukturen erfolgt durch die zunehmend denaturierende Konzentration des Chaotrops. Die Denaturierung erfolgt meistens nicht kontinuierlich über den Gradienten, sondern in diskreten Schritten. Dadurch können Mutationen wie SNP in zwei DNA-Sequenzen verglichen werden. Der Nachteil der chemischen Gradienten ist dessen geringe Reproduzierbarkeit und bei Heteroduplexen eine gelegentlich unscharfe Auftrennung.
Geschichte
Die DGGE wurde ab 1979 von Leonard Lerman und Stuart Fischer an der SUNY Albany entwickelt.[5][6][7] Die Trennung von Proteinen per DGGE wurde erstmals 1994 von Thomas E. Creighton am MRC in Cambridge beschrieben.[8] Die TGGE wurde ab 1981 durch Thatcher und Hodson sowie durch Roger Wartell entwickelt.[9][10][11]
↑C. N. Hestekin, A. E. Barron: The potential of electrophoretic mobility shift assays for clinical mutation detection. In: Electrophoresis. Band 27, Nummer 19, Oktober 2006, ISSN0173-0835, S. 3805–3815, doi:10.1002/elps.200600421, PMID 17031787.
↑M. Salimullah, K. Hamano, M. Tachibana, K. Inoue, K. Nishigaki: Efficient SNP analysis enabled by joint application of the muTGGE and heteroduplex methods. In: Cellular & molecular biology letters. Band 10, Nummer 2, 2005, ISSN1425-8153, S. 237–245, PMID 16010289.
↑S. G. Fischer, L. S. Lerman: Length-independent separation of DNA restriction fragments in two-dimensional gel electrophoresis. In: Cell. Band 16, Nummer 1, Januar 1979, ISSN0092-8674, S. 191–200, PMID 369706.
↑T. E. Creighton, D. Shortle: Electrophoretic characterization of the denatured states of staphylococcal nuclease. In: Journal of molecular biology. Band 242, Nummer 5, Oktober 1994, ISSN0022-2836, S. 670–682, doi:10.1006/jmbi.1994.1616, PMID 7932723.
↑D. R. Thatcher, B. Hodson: Denaturation of proteins and nucleic acids by thermal-gradient electrophoresis. In: The Biochemical journal. Band 197, Nummer 1, Juli 1981, ISSN0264-6021, S. 105–109, PMID 6797412, PMC 1163059 (freier Volltext).
↑R. M. Wartell, S. H. Hosseini, C. P. Moran: Detecting base pair substitutions in DNA fragments by temperature-gradient gel electrophoresis. In: Nucleic acids research. Band 18, Nummer 9, Mai 1990, ISSN0305-1048, S. 2699–2705, PMID 2339057, PMC 330754 (freier Volltext).
↑J. Zhu, R. M. Wartell: The relative stabilities of base pair stacking interactions and single mismatches in long RNA measured by temperature gradient gel electrophoresis. In: Biochemistry. Band 36, Nummer 49, Dezember 1997, ISSN0006-2960, S. 15326–15335, doi:10.1021/bi9716783, PMID 9398261.